Menu
Szczegółowy program kursu
Techniki immunocytochemiczne są często wykorzystywaną metodą w pracy naukowej, diagnostyce, biotechnologii i farmacji. Proponowany Państwu, trzydniowy kurs, jest kierowany do osób, które chcą we własnej pracy laboratoryjnej bądź dydaktycznej wykorzystać informacje dotyczące technik immunocytochemicznych. Główną ideą kursu jest zapoznanie uczestników z praktycznymi aspektami technik lokalizacji molekuł in situ na poziomie mikroskopu elektronowego (technika przed- i pozatopieniowa) oraz świetnego w tym konfokalnego. Zapraszamy także studentów, którzy chcą rozszerzyć swoje umiejętności i nabyć nowe kwalifikacje (uczestnicy kursu będą otrzymywać dyplomy). Ostatni etap kursu będzie dotyczył interpretacji - w tym oceny - uzyskanych obrazów po zastosowaniu powyższych technik. W trakcie kursu prowadzący będą starali się odpowiedzieć i pomóc rozwiązać indywidualne problemy uczestników kursu związane z powyższymi technikami
Ramowy program kursu:
Kurs będzie się odbywać 19-20/09/2011. Uczestnicy kursu pracując w parach, będą brali udział we wszystkich trzech typach technik laboratoryjnych. Materiał ćwiczeniowy będą stanowić komórki somatyczne i generatywne roślin oraz zwierząt.
19 Wrzesień
10.00 Rozpoczęcie kursu
10.10 Wykład prof. dr hab. E. Bednarska-Kozakiewicz „Jak metodami mikroskopii elektronowej badamy architekturę jądra komórek roślinnych”.
10.50 Wykład dr J. Niedojadło „Wprowadzenie do technik immunocytochemicznych. Metody wzmacniania sygnału”.
11.30 Wykład dr M. Lenartowska „Porównanie technik immunocytochemicznych przed i po zatopieniu materiału na poziomie mikroskopu elektronowego”.
12.15 Przerwa obiadowa
13.30 Zajęcia laboratoryjne „Lokalizacja polimerazy II RNA i/lub snRNA na poziomie mikroskopu fluorescencyjnego i konfokalnego” (cz.1)
16.00 Przerwa kawowa
16.15 Zajęcia laboratoryjne „Lokalizacja pektyn i aktyny na poziomie mikroskopu elektronowego”(cz.1)
20 wrzesień
9.00 Zajęcia laboratoryjne „Lokalizacja polimerazy II RNA i/lub snRNA na poziomie mikroskopu fluorescencyjnego i konfokalnego” (cz.2) w tym przerwa kawowa ok. 10.00
11.45 Zajęcia laboratoryjne „Lokalizacja pektyn i aktyny na poziomie mikroskopu elektronowego” (cz.2) w tym przerwa kawowa ok. 13.00
14.30 Przerwa obiadowa
15.30 Obserwacje wyników w mikroskopie elektronowym
16.30 Obserwacje wyników w mikroskopie fluorescencyjnym i konfokalnym
18.00 Zakończenie kursu i rozdanie certyfikatów